了解生化分析仪基本参数的原理，有利于医疗器械、试剂的正确使用，有助于正确分析和处理测定数据。但是，配套系统的原装分析参数不宜更改；采用非仪器配套的试剂及校准品体系时，参数修改要慎重，对于不同仪器、不同类型的反应分析程序，所显示的人机对话分析参数信息有所不同。对于固定时间仪器来说，使用开放试剂盒难度较大，更改参数复杂，结果也不尽满意。

对于终点法来说，读取反应达到平衡时的吸光度计算样品中待测物的浓度。对于连续监测法来说，要注意观察反应进程曲线，从而确定反应的预孵育期，延迟时间、连续监测的时段（固定时间分析仪则无法更改，不能根据客户意愿设置，必须使用仪器配套试剂盒，这样成本高）。对于一级或伪一级反应来说，连续监测的时间是一级反应的动态期的吸光度；对于基于零级反应的酶催化活性浓度速率法测定，连续监测的是零级线性反应期的吸光度。对于连续监测法来说，动态反应期的时间越长，越适用于临床应用，对于以酶为工具的代谢物酶促动力测定法，要增加动态反应期，即延长反应达到平衡的时间，可在反应体系中加入竞争性抑制剂，这样还可以提高测定的线性范围，对于酶催化活性浓度连续监测法来说，一定要注意线性反应时间，有的酶，例如，以硫代丁酰胆碱为底物的血清假性胆碱酯酶速率测定法，线性反应时间只有90秒。对于连续监测法来说，在监测期至少应读4个点。

1．反应时间(Reaction Time)多数全自动生化分析仪可以在整个测定反应周期连续监测(如HITACHI 7170常规测定周期10分钟、监测34点，OLYMPUS AU 600固定周期8分15秒、监测27点)，但反应监测时间是指该时间内的测定读数要用于结果计算。它的设置与加样点、加试剂点(包括R1、R2……)、监测时间(读数点)、读数间隔时间及试剂样品比例等有关，要结合方法学，兼顾权衡。

 指医疗设备的一个分析周期中，试剂和样品混合最末一点测定读数时间。它对终点法尤其重要，是终点法的瓶颈。有的仪器多个反应时间可选L如Hl—TACHI 7170)，须预先选定。多数仪器10分钟左右，这对试剂提出了较高要求。不少终点法试剂(尤其手工法试剂)反应时间常常也在lO分钟上下，测定时间没有余地，当样品浓度高或试剂质量下降时，均可致测定结果偏低。因此，终点法不宜采用标明反应时间接近和长于仪器最大反应时间的试剂盒。否则，必须用接近测定范围上限的高浓度质控血清监测。

2．监测时间(读数点)和读数间隔时间各类型仪器不尽一致。离心式生化仪读数间隔时间短，监测时间也短。流动式生化仪读数间隔时间一般较长。分立式生化仪一般监测时间10分钟左右，间隔10-30秒读数一次。有的仪器在整个测定反应周期全程读数，有的只读取指定时间(点)的吸光度。

3．反应监测时间还要考虑延迟时间的长短、测定物质的浓度范围及相关临床价值和工作效率等因素。

4. 通过对反应时间不同的全自动生化分析仪进行 方法 对比和预期偏差分析，探讨反应时间不同的生化分析仪检测结果是否有可比性及检测结果偏差是否在允许的范围内。方法：以hitachi 7170a全自动生化分析仪为参比方法，以olympus au640为实验方法，依据美国国家临床实验室标准委员会（nccls）ep9a2文件对终点法测定glu和hdlc两项指标进行对比实验，并观察olympus au640测定是否达到终点。结果：olympus au640与hitachi 7170a比较，glu测定达到终点，相关系数r=0.995 4，hdlc测定相同时间两种生化仪均未达到终点，相关系数r=0.981 0。如仪器可调节反应时间，则可延长使其达到终点再读数R值就越好，结果越准确。相对固时间仪器则不能。

5. 动物不同物种间存在明显的差异，甚至物种内也有差异，导致不同物种的细胞计数及相关指标具有复杂性.一些生化指标（如UREA,CR,GLU)对于不同动物反应时间有不同要求。比如海豚血清时间越长越容易形成胶状，这样我们可以根据仪器的特点来调节反应时间长短，混匀速度等等。再比如大小鼠在做UREA\GLU等指标时，大部分试剂盒参数是中间孵育五分钟，其实在二、三分钟左右已达到反应平衡。